用途：
Optoleaf便攜式日射分光光度計可以用很低的成本同時測量大量位點（如大量葉片）的累積受光量。這種技術在植物光合作用研究、作物受光量和受光態勢研究等方面，在植物生理生態學、農學、林學、園藝學、水生生物學、水生態學等領域得到了非常成功的應用。
該技術包括便攜式日射分光光度計和配套的感光膠片兩部分。配套的感光膠片是一種特制的感光膠片，其接受光照后會發生褪色，在不同的累積光強下，褪色率不同，累積光強越多，褪色率越高。測量時用剪刀裁切約1 cm寬小片，每一片均用便攜式日射分光光度計測量其吸光度初值。然后將該膠片在傍晚時分貼在需要測量的位點（如植物葉片表面），經過1天、2天、3天或1周、2周、3周的日射后，在傍晚時取下該膠片，并再次用日射分光光度計測量吸光度。根據兩次測量的吸光度，就可以計算出該膠片在測量時間（幾天或幾周）內接受到的累積光強。
由于配套的感光膠片非常便宜，因此可以大量的布點測量。如可以對一株植物的所有葉片都貼上日射計膠片進行積分光強測量；如可以對溫室內的不同位點貼上日射計膠片進行測量用于溫室光強均勻度分析；如可以貼在水中不同深度的支撐物表面進行水體積分光強剖面分析或濁度測量；等等。
一卷日射計膠片長10 m，如果裁成1 cm的小片進行測量的話，一卷膠片可進行1000次測量。膠片在不使用的時候可以在暗處存放數年。
功能特性:
低成本進行累積光強測量
可以貼在任何物體的表面（包括水下）進行測量
日射計膠片特別輕，幾乎可以貼在任何葉片表面而不影響葉片自然角度
可以對大量位點的大量樣品同時進行測量
可以在全國各地同時布點，測量完收集日射計膠片回到實驗室進行測量
可以根據測量時間和光照強弱選擇合適的日射計膠片
配備專用便攜式日射分光光度計，適合現場測量
可以在水下進行測量
應用領域:
光合作用研究
作物冠層受光量研究
農作物、蔬菜、果樹生理和栽培研究
森林生態學研究
設施園藝研究
水體光強剖面測量和濁度測量
水生植物生理生態學研究
技術規格：
Optoleaf便攜式日射分光光度計參數： | |
型號 | D-Meter RYO-470M |
工作溫度 | 5°C to 35°C |
測量范圍 | 2.2 to 0.6 |
測量初始值 | 2.0 ± 0.2 |
外形尺寸 | W76×H27×D135mm |
重量 | 209g含電池 |
供電 | 使用兩節AA電池 |
感光膠片參數： | |
種類 | Y-1W (Yellow-1Week) 長周期；O-1D (Orange-1Day)短周期；R-3D (Red-3Days)標準周期。 |
顏色 | 對應為黃、橙、紅 |
感光膠片測量時間 | 夏季晴天分別為3-7/0.5-1/1-3天；夏多云或冬晴分別為5-14/1-2/2-5天；冬多云分別為1-3周/2-4/4-8天。 |
最大吸收波長 | 對應分別為468/492/521nm |
褪色率公式 | 對應為D／D0×100，D／D0×100， Log10(D／D0×100) |
備注：
1、上述的測量期間原則上是指導性的?？?根據實際測量條件進行調整；
2、感光膠片有正面和背面之分，您拿到的一卷膠片朝向卷軸的內側為正面，測量時應該正面朝上接受光照
3、D0 =開始時的吸光度（曝光前）D =曝光后的吸光度；
4、開始時，檢查測量點的曝光狀態，確保吸光度不低于0.6，如果吸光度小于0.6，則無法進行正確的測量；（使用時的標準初始值：2.0±0.2）；
5、D-Meter系列配套薄膜測量儀可用于現場檢測薄膜的曝光狀態。
產地：日本
代表文獻:
1.Isoda A., Yoshimura T., Ishikawa T., Nakamura Y., Nojima H., Takasaki Y., An analysis of light intercepting characteristics in rice by using simple integrated solarimeter. Tech. Bull. Fac. Hort. Chiba. Univ., 1990, 43: 39-43.
2. Isoda A., Yoshimura T., Ishikawa T., Radiation interception in field grown Soybeans measured by integrated solarimeter films. Jpn. J. Crop Sci., 1992, 61(1): 124-130.
3. Isoda A., Yoshimura T., Ishikawa T., Nojima H., Takasaki Y., Effects of leaf movement on radiation interception in field grown Leguminous crops: I. Peanut (Arachis hypogaea). Jpn. J. Crop Sci., 1993, 62(2): 300-305.
4. Isoda A., Yoshimura T., Ishikawa T., Wang P., Nojima H., Takasaki Y., Effects of leaf movement on radiation interception in field grown Leguminous crops: II. Soybean (Glycine max). Jpn. J. Crop Sci., 1993, 62(2): 306-312
5. Isoda A., Yoshimura T., Ishikawa T., Nojima H., Takasaki Y., Effects of leaf movement on radiation interception in field grown Leguminous crops: III. Relation to leaf temperature and transpiration among soybean cultivars. Jpn. J. Crop Sci., 1993, 63(4): 657-663.
6. Isoda A., Misa A. L., Nojima H., Takasaki Y., Effects of leaf movement on radiation interception in field grown Leguminous crops: III. Relation to leaf temperature and transpiration among peanut cultivars. Jpn. J. Crop Sci., 1996, 65(4): 700-706.
7. Isoda A., Yoshimura T., Ishikawa T., Nojima H., Takasaki Y., Solar radiation penetration and distribution in Soybean communities. Jpn. J. Crop Sci., 1994, 63(2): 298-304.
8. Kawamura K., Cho M., Takeda H., The applicability of a color acetate film for estimating photosynthetic photon flux density in a forest understory. J. Forest Res., 2005, 10(3): 247-249.
9. Wang C., Isoda A., Li Z., Wang P., Transpiration and leaf movement of Cotton cultivars grown in the field under arid conditions. Plant Prod. Sci., 2004, 7(3): 266-270.
10. Wang P., Isoda A., Wei G., Yoshimura T., Ishikawa T., Growth and Adaptation of Soybean cultivars under water stress conditions: II. Effects of leaf movement on radiation interception. Jpn. J. Crop Sci., 1994, 63(4): 699-705.
